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IF=18.1【客户文章】少突胶质细胞如何参与帕金森病理?广医一院徐评议/张文龙/黄树宣团队揭示IL-33–ST2轴新机制

25 人阅读发布时间:2026-11-03 16:31

撰文︱朱紫婷

审阅︱张文龙

帕金森病(Parkinson's disease,PD)的核心病理特征是黑质致密部多巴胺能神经元丢失与α-突触核蛋白(α-synuclein,α-syn)异常聚集。α-syn基因(SNCA)的A53T突变与家族性PD密切相关,基于该突变构建的转基因小鼠已成为研究α-syn病理的重要模型。

长期以来,PD的胶质细胞研究主要集中于小胶质细胞(microglia)与星形胶质细胞(astrocyte);由于多巴胺能神经元髓鞘化相对稀疏,作为中枢髓鞘形成细胞的少突胶质细胞(oligodendrocyte,OL)所受关注相对有限。近年来,单细胞测序与空间转录组学(spatial transcriptomics,ST)陆续报道PD皮层OL转录谱改变,并与α-syn病理空间相关;与此同时,α-syn与脂质的异常相互作用被视为PD的重要特征,多项研究在患者脑组织与体液中观察到脂质代谢紊乱。

然而,既往代谢研究多依赖组织匀浆(bulk)分析,缺乏与细胞类型、空间位置相对应的代谢信息;OL在PD中如何变化,这些变化是疾病的原因还是结果,也仍不明确。

2026年9月25日,广州医科大学附属第一医院神经内科徐评议、张文龙与广西壮族自治区人民医院神经内科黄树宣为共同通讯作者,广州医科大学附属第一医院博士毕业生朱紫婷,硕士毕业生徐宗唐、陈敏珊,以及博士后丁柳艳为共同第一作者,在Nature Communications上在线发表了题为“Spatial multi-omics reveals disease-associated oligodendrocytes and metabolic dysregulation in male Parkinson's disease mouse models”的研究论文[1]。该研究整合单核RNA测序(snRNA-seq)、Stereo-seq空间转录组与空间代谢组三类技术,开展单细胞与空间多组学联合分析,在A53T小鼠中鉴定出两类疾病相关少突胶质细胞(DOL)亚群,二者均高表达免疫因子Il33,其中DOL1亚群以Kirrel3为特异性分子标志,并证实少突胶质细胞来源的IL-33经小胶质细胞ST2受体促进α-syn清除、改善运动功能;相关改变在PD患者中得到初步验证。

 

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1. 单细胞与空间多组学图谱:A53T帕金森病小鼠脑内少突胶质细胞扩增

研究者以6月龄、12月龄人源SNCAA53T转基因小鼠[2]和12月龄C57BL/6J野生型(WT)小鼠为对象,在同一组织背景下同步开展snRNA-seq、Stereo-seq空间转录组与AFADESI-MSI空间代谢组分析(图1a)。差异基因显著富集于氧化磷酸化、铁死亡与溶酶体功能等PD经典相关通路,同时涉及突触囊泡循环、糖鞘脂生物合成、谷氨酸代谢等少突胶质细胞相关功能与代谢通路。其中,A53T-12M组整体少突胶质细胞数量显著增加,成熟髓鞘标志物Mbp、Mobp表达上调。

 

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图1 单细胞与空间多组学研究设计及少突胶质细胞改变

 

2. 鉴定疾病相关少突胶质细胞(DOL)亚群:Il33为共有标志,Kirrel3为DOL1特异

对少突胶质细胞进一步亚群分析,得到10个亚群(OL6、OL8为未成熟亚型)。其中DOL1与DOL2两个成熟少突胶质亚群在A53T-12M组中占比最高,被命名为疾病相关少突胶质细胞(disease-associated oligodendrocytes,DOL);两个亚群均显著上调Il33,其中DOL1以Kirrel3为特异性标志,DOL2特征性高表达Apod、Shroom3。GSVA分析显示,PD、阿尔茨海默病与亨廷顿病等神经退行性通路在DOL中显著激活,甘油磷脂代谢下调。借助Allen脑细胞图谱(Allen Brain Cell–Whole Mouse Brain atlas)进行锚定整合与标签迁移,DOL1与DOL2在中脑等多个脑区均被稳定识别,提示该转录特征在小鼠脑内具有保守性。 

 

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图2 少突胶质细胞亚群分型及DOL1/DOL2在A53T小鼠中的扩增

 

3. 少突胶质细胞IL-33-小胶质细胞ST2轴限制α-突触核蛋白病理:小鼠、人脑与脑脊液验证

为判断疾病相关少突胶质细胞的状态是原发性改变还是继发性反应,研究者在两种独立模型中开展免疫荧光共定位分析。在A53T小鼠SN/VTA区,IL-33⁺OLIG2⁺与KIRREL3⁺OLIG2⁺细胞占OLIG2⁺细胞的比例随病程递增;在AAV介导神经元过表达α-syn的野生型小鼠中,IL-33⁺少突胶质细胞自注射后1个月起即持续显著升高;KIRREL3⁺少突胶质细胞自注射后2个月才出现显著升高,并持续至12个月。野生型小鼠并无遗传易感背景,这些改变在α-syn过表达之后逐步出现,提示DOL更可能是对突触核蛋白病理的反应性结果,而非导致疾病的原因。 

 

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图3 A53T与AAV-α-syn两种模型中IL-33⁺/KIRREL3⁺少突胶质细胞的进行性扩增

 

这一结论得到了跨物种验证的支持:尸检结果显示,PD患者中脑黑质内KIRREL3⁺OLIG2⁺与IL-33⁺OLIG2⁺少突胶质细胞均显著多于健康对照,ST2⁺小胶质细胞同样增多;患者脑脊液(cerebrospinal fluid,CSF)中IL-33与ST2浓度亦显著升高,提示该少突胶质-小胶质细胞信号轴在人类PD中系统性激活,脑脊液中的IL-33与ST2有潜力作为反映中枢神经炎症的候选体液生物标志物。功能层面,通过病毒特异性敲低少突胶质细胞Il33后,小胶质细胞ST2表达下降、不溶性α-syn负荷增加、运动表现变差;向黑质内补充重组IL-33蛋白则产生相反的效应,可减轻α-syn病理、改善运动功能。不溶性α-syn负荷、小胶质细胞ST2表达与吞噬状态、运动行为三项独立指标,在IL-33 敲低与补充的双向干预中均呈反向变化,验证了少突胶质细胞来源的IL-33通过小胶质细胞ST2受体,发挥抑制α-syn病理的功能。

 

4. 空间代谢组锁定黑质/腹侧被盖区(SN/VTA)脂质与谷氨酸代谢紊乱

AFADESI-MSI空间代谢组在正、负离子模式下均可将A53T-12M、A53T-6M与WT-12M三组代谢谱清晰区分,且改变呈明显的区域特异性。在SN/VTA与中脑,二酰甘油DG(42:5)与己糖基神经酰胺(hexosylceramide,HexCer,暂无法区分葡萄糖/半乳糖神经酰胺异构体)显著改变,提示脂质信号与神经递质代谢紊乱;甘油磷脂代谢在SN/VTA显著下调,伴随磷脂酰乙醇-胺(phosphatidylethanolamine,PE)、磷脂酰甘油(phosphatidylglycerol,PG)及甘油磷酸甘油(GPG)等多种膜磷脂水平下降,与α-syn易在膜脂异常时发生错误折叠和聚集的假说一致。通路水平的GSVA富集则显示,酪氨酸代谢、鞘脂代谢、多巴胺能突触、自噬与铁死亡相关通路在A53T小鼠多个脑区被同步扰动。

多组学整合进一步发现,A53T-12M对WT-12M、A53T-12M对A53T-6M两组比较共有96种差异代谢物,其中L-谷氨酸、胆碱、柠檬酸、磷脂酰胆碱(phosphatidylcholine,PC)、HexCer与辅酶Q9(coenzyme Q9)等在两个比较组中均发生显著改变,整体指向神经递质传递、膜完整性与线粒体功能三个层面的功能紊乱。基于KEGG Markup Language的代谢物—基因网络将L-谷氨酸定位为连接谷氨酸能突触传递、氧化应激、铁死亡与脂代谢的核心节点,Snca、Ubb、Cox8a等基因亦被纳入该网络。作者强调,上述结论源自测序与代谢数据的相关性分析,尚不能等同于因果机制,需要进一步实验验证。 

 

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图4 SN/VTA区以谷氨酸为核心的免疫代谢网络

 

总结

该研究构建了A53T小鼠PD模型的空间分辨多组学图谱,发现两类DOL亚群,均高表达IL-33,其中DOL1亚群特异性高表达KIRREL3,功能验证了少突胶质细胞IL-33–ST2轴可调控小胶质细胞对α-syn的吞噬与清除,为“少突胶质细胞—神经炎症—代谢”三者的整合提供了新的切入点,也为帕金森病的胶质细胞靶向治疗提供了潜在靶点。

本研究仍存在几点局限:一是每组样本量有限,可能未能完全捕捉少突胶质细胞的转录异质性;二是A53T转基因模型由外源启动子驱动α-syn表达,病理表型与人类疾病存在差异,结论仍需更多模型与人脑样本验证;三是空间代谢组暂无法区分部分脂质同分异构体,注释需后续靶向质谱确认;四是仅纳入雄性小鼠,结论外推至雌性群体需谨慎。

今后在临床研究方面,可在携带SNCA-A53T等致病突变的高危人群中开展纵向研究,检验区域特异性代谢改变能否预测病程或充当标志物,并在更大规模、不同类型的人脑样本中验证DOL标志物(IL-33、KIRREL3)的诊断与治疗转化价值。

特别感谢编辑部与参与本研究双盲评审的匿名审稿人,其修改意见弥补了初版稿件的诸多不足。

 

第一作者简介:朱紫婷,博士,毕业于广州医科大学附属第一医院神经病学专业,硕博期间专注于帕金森病等神经系统疾病相关的细胞机制、单细胞多组学研究。

 

通讯作者简介:张文龙,研究员,博士生导师,博士后合作导师,主要聚焦胶质细胞在帕金森病中的作用机制研究。

 

参考文献:

[1] Zhu Z, Xu Z, Chen M, Ding L, et al. Spatial multi-omics reveals disease-associated oligodendrocytes and metabolic dysregulation in male Parkinson's disease mouse models. Nat Commun. 2026. doi:10.1038/s41467-026-78051-5

[2] Giasson BI, et al. Neuronal α-synucleinopathy with severe movement disorder in mice expressing A53T human α-synuclein. Neuron. 2002;34(4):521-533.

[3] Smajić S, et al. Single-cell sequencing of human midbrain reveals glial activation and a Parkinson-specific neuronal state. Brain. 2022;145(3):964-978.

[4] Goralski TM, et al. Spatial transcriptomics reveals molecular dysfunction associated with cortical Lewy pathology. Nat Commun. 2024;15:2642.

[5] Fanning S, Selkoe D. Parkinson disease is a fatty acidopathy. Nat Rev Neurol. 2025;21:642-655.

[6] Fu AKY, et al. IL-33 ameliorates Alzheimer's disease-like pathology and cognitive decline. Proc Natl Acad Sci USA. 2016;113(19):E2705-E2713.

[7] Vainchtein ID, et al. Astrocyte-derived interleukin-33 promotes microglial synapse engulfment and neural circuit development. Science. 2018;359(6381):1269-1273.

[8] Kenigsbuch M, et al. A shared disease-associated oligodendrocyte signature among multiple CNS pathologies. Nat Neurosci. 2022;25(7):876-886.

[9] Yao Z, et al. A high-resolution transcriptomic and spatial atlas of cell types in the whole mouse brain. Nature. 2023;624:317-332.

[10] Adams L, et al. A single-nuclei paired multiomic analysis of the human midbrain reveals age- and Parkinson's disease-associated glial changes. Nat Aging. 2024;4:364-378.

 

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